PCR實(shí)驗(yàn)技術(shù)中的高GC含量PCR（GC-richPCR）介紹：具有高GC含量（>65%）的模板由于G和C堿基間的強(qiáng)氫鍵影響，比較難以擴(kuò)增。高GC含量序列同時(shí)也涉及二級結(jié)構(gòu)。因此，高GC含量序列可使DNA聚合酶在擴(kuò)增時(shí)卡住，從而影響了DNA的合成。為了擴(kuò)增高GC含量片段，雙鏈模板必須分離，以便引物結(jié)合及DNA聚合酶讀取序列。為了克服強(qiáng)GC相互作用，較常用的方法是依靠PCR添加劑或共溶劑來幫助DNA變性（圖6A），如DMSO。這些試劑通常會降低引物的Tm，所以退火溫度也需做相應(yīng)的調(diào)整。高合成能力的DNA聚合酶由于其與模板的強(qiáng)結(jié)合能力，有助于高GC含量模板的PCR擴(kuò)增（圖6B）。高熱穩(wěn)定性DNA聚合酶也有益于高GC含量PCR擴(kuò)增，因?yàn)楦叩淖冃詼囟龋ㄈ?8℃代替95℃）可促進(jìn)解鏈和PCR擴(kuò)增。pcr檢測實(shí)驗(yàn)有哪些分類？安徽推薦pcr原理

PCR實(shí)驗(yàn)技術(shù)中的5’RACE-PCR介紹：利用mRNA的3‘末端的poly(A)尾巴作為一個引物結(jié)合位點(diǎn)，以O(shè)ligo(dT)30MN作為鎖定引物在反轉(zhuǎn)錄酶MMLV作用下，反轉(zhuǎn)錄合成標(biāo)準(zhǔn)一號鏈cDNA.利用該反轉(zhuǎn)錄酶具有的末端轉(zhuǎn)移酶活性，在反轉(zhuǎn)錄達(dá)到一號鏈的5‘末端時(shí)自動加上3一5個(dC)殘基，退火后(dC)殘基與含有SMART寡核苷酸序列Oliogo(dG)通用接頭引物配對后，轉(zhuǎn)換為以SMART序列為模板繼續(xù)延伸而連上通用接頭(figure2)。然后用一個含有部分接頭序列的通用引物UPM(universalprimer,UPM)作為上游引物，用一個基因特異引物2(GSP2genespecificprimer,GSP)作為下游引物，以SMART一號鏈cDNA為模板，進(jìn)行PCR循環(huán)，把目的基因5‘末端的cDNA的片段擴(kuò)增出來。比較終，從2個有相互重疊序列的3'/5‘-RACE產(chǎn)物中獲得全長cDNA，或者通過分析RACE產(chǎn)物的3‘和5‘端序列，合成相應(yīng)引物擴(kuò)增出全長cDNA.四川推薦pcr怎么樣簡述熒光定量pcr的基本原理。

PCR實(shí)驗(yàn)技術(shù)中cDNA第二鏈的合成方法有以下幾種:1、自身引導(dǎo)法合成的單鏈cDNA3'端能夠形成一短的發(fā)夾結(jié)構(gòu)，這就為第二鏈的合成提供了現(xiàn)成的引物，當(dāng)***鏈合成反應(yīng)產(chǎn)物的DNA:RNA雜交鏈變性后利用大腸桿菌DNA聚合酶ⅠKlenow片段或反轉(zhuǎn)錄酶合成cDNA第二鏈，***用對單鏈特異性的S1核酸酶消化該環(huán)，即可進(jìn)一步克隆。但自身引導(dǎo)合成法較難控制反應(yīng)，而且用S1核酸酶切割發(fā)夾結(jié)構(gòu)時(shí)無一例外地將導(dǎo)致對應(yīng)于mRNA5'端序列出現(xiàn)缺失和重排，因而該方法目前很少使用。2、置換合成法該方法利用鏈在反轉(zhuǎn)錄酶作用下產(chǎn)生的cDNA:mRNA雜交鏈不用堿變性，而是在dNTP存在下，利用RNA酶H在雜交鏈的mRNA鏈上造成切口和缺口。從而產(chǎn)生一系列RNA引物，使之成為合成第二鏈的引物，在大腸桿菌DNA聚合酶Ⅰ的作用下合成第二鏈。該反應(yīng)有3個主要優(yōu)點(diǎn):(1)非常有效；(2)直接利用鏈反應(yīng)產(chǎn)物，無須進(jìn)一步處理和純化；(3)不必使用S1核酸酶來切割雙鏈cDNA中的單鏈發(fā)夾環(huán)。

PCR實(shí)驗(yàn)技術(shù)中的定量PCR介紹：由于序列擴(kuò)增的產(chǎn)量依賴于模板DNA的量，所以PCR常用于對樣品中DNA進(jìn)行定量，常用的應(yīng)用是基因表達(dá)的定量。終點(diǎn)法PCR是一種可能的方法，但其有較大的缺點(diǎn)，通過凝膠電泳來檢測產(chǎn)量，檢測的靈敏度非常有限。更重要的是，使用終點(diǎn)PCR是在PCR反應(yīng)結(jié)束后進(jìn)行定量，此時(shí)擴(kuò)增已經(jīng)達(dá)到平臺期，DNA凝膠染色的強(qiáng)度與DNA起始量不成線性關(guān)系。盡管如此，通過終點(diǎn)法PCR可以對基因表達(dá)進(jìn)行半定量，可以使用一系列稀釋程度不同的DNA樣本作為模板起始量，或者在特定的PCR循環(huán)處獲取擴(kuò)增產(chǎn)物，然后通過凝膠顯色強(qiáng)度來估計(jì)基因的表達(dá)量。熒光定量pcr和實(shí)時(shí)定量pcr的區(qū)別？

PCR由變性--退火--延伸三個基本反應(yīng)步驟構(gòu)成：

1、模板DNA的變性：模板DNA經(jīng)加熱至93℃左右一定時(shí)間后，使模板DNA雙鏈或經(jīng)PCR擴(kuò)增形成的雙鏈DNA解離，使之成為單鏈，以便它與引物結(jié)合，為下輪反應(yīng)作準(zhǔn)備。

2、模板DNA與引物的退火（復(fù)性）：模板DNA經(jīng)加熱變性成單鏈后，溫度降至55℃左右，引物與模板DNA單鏈的互補(bǔ)序列配對結(jié)合。3、引物的延伸：DNA模板--引物結(jié)合物在72℃、DNA聚合酶（如TaqDNA聚合酶）的作用下，以dNTP為反應(yīng)原料，靶序列為模板，按堿基互補(bǔ)配對與半保留復(fù)制原理，合成一條新的與模板DNA鏈互補(bǔ)的半保留復(fù)制鏈。重復(fù)循環(huán)變性--退火--延伸三過程就可獲得更多的“半保留復(fù)制鏈”，而且這種新鏈又可成為下次循環(huán)的模板。每完成一個循環(huán)需2～4分鐘，2～3小時(shí)就能將待擴(kuò)目的基因擴(kuò)增放大幾百萬倍 英瀚斯生物pcr檢測，保證真實(shí)實(shí)驗(yàn)檢測，數(shù)據(jù)保密完整性。黑龍江有哪些pcr原理

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原位PCR就是在組織細(xì)胞里進(jìn)行PCR反應(yīng)，它結(jié)合了具有細(xì)胞定位能力的原位雜交和高度特異敏感的PCR技術(shù)的優(yōu)點(diǎn)，是細(xì)胞學(xué)科研與臨床診斷領(lǐng)域里的一項(xiàng)有較大潛力的新技術(shù)。原位PCR是Hasse等于1990年建立的，實(shí)驗(yàn)用的標(biāo)本是新鮮組織、石蠟包埋組織、脫落細(xì)胞、血細(xì)胞等。其基本方法為：1、固定組織或細(xì)胞:將組織細(xì)胞固定于預(yù)先用四氟乙烯包被的玻片上，并用多聚甲醛處理，再滅活除去細(xì)胞內(nèi)源性過氧化物酶。2、蛋白酶K消化處理:用60ug/ml的蛋白酶K將固定好的組織細(xì)胞片55℃消化處理2h后，96℃2min以滅活蛋白酶K。3、PCR擴(kuò)增:在組織細(xì)胞片上，加PCR反應(yīng)液，覆蓋并加液體石蠟后，直接放在擴(kuò)增儀的金屬板上，進(jìn)行PCR循環(huán)擴(kuò)增。有的基因擴(kuò)增儀帶有專門用于原位PCR的裝置。4、雜交:PCR擴(kuò)增結(jié)束后，用標(biāo)記的寡核苷酸探針進(jìn)行原位雜交。5、顯微鏡觀察結(jié)果。安徽推薦pcr原理

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