外泌體的miRNA或蛋白質等遺傳分子與肝臟病理息息相關，在肝臟疾病診斷中可作為潛在的治理靶點或分子標志物。對外泌體的研究，將有利于闡述肝臟及其疾病的發生和發展機制，為尋求臨床可用的biomarkers和開發新的治理方法提供支持。外泌體可以通過轉運蛋白和miRNAs進行細胞間交流，從而作用于周圍的細胞并改變肝臟的微環境。細胞內多泡體（MVBs）與細胞膜融合，釋放內部的外泌體到細胞外，被其他細胞攝取，通過細胞膜融合或內吞作用釋放攜帶的內含物，在受體細胞中調控生理活動。外泌體介導的細胞間交流可以改變瘤的生長、細胞遷移、抗病毒等生理過程。外泌體內容物的進入或外泌體信號的誘導可能涉及配體受體誘導的細胞內信號或融合。海洋生物外泌體NTA

目前，在各種健康與疾病模型中都發現，外泌體通過分子信息傳遞扮演著重要的角色。外泌體還越來越多地被認為是疾病的生物標志物和預后因子，具有重要的臨床診斷和治理意義。除此之外，它們還有潛力被用于臨床，作為基因和藥物遞送的載體。健康人和多種疾病的患者會將含有不同RNA和蛋白質成分的外泌體釋放到體液循環中，因其特殊性，外泌體可以作為生物標志物來對疾病進行檢測。例如，從血液或尿液中分離的外泌體可以用作病癥、心臟病的診斷和預后的指標。湖南CD9外泌體慢病毒包裝外泌體功能在研究初期階段發現是參與細胞成熟過程中去除不必要的蛋白質。

酶聯免疫吸附測定（ELISA）：將其中一種針對外泌體表面抗原的抗體固定在微孔板的表面上，將外泌體樣品暴露于含有固定抗體的孔中，由于抗體-抗原相互作用，表達抗原的外泌體將被捕獲固定在板上。將未捕獲的樣品內容物洗掉，并使用另一種抗體檢測固定的外泌體。ELISA已用于從尿液、血漿和血清中分離出外泌體，當使用標準液（已知外泌體的量）創建標準曲線時，甚至可以進行定量。但是，此方法需要通過超速離心或超濾對樣品進行預處理。同樣，流場-流分離與紫外線分析儀和光散射檢測器相結合已被用于分析外泌體的大小和純度。

外泌體的提取主要包括以下幾種方式。一是超速離心法，這是目前外泌體提取較常用的方法。此種方法得到的外泌體量多，但是純度不足，電鏡鑒定時發現外泌體聚集成塊，由于微泡和外泌體沒有非常統一的鑒定標準，也有一些研究認為此種方法得到的是微泡不是外泌體。二是過濾離心，這種操作簡單、省時，不影響外泌體的生物活性，但同樣存在純度不足的問題。三是密度梯度離心法，用此種方法分離到的外泌體純度高，但是前期準備工作繁雜，耗時，量少。膜受體的識別是外泌體細胞反應的基礎，它可能活躍受體并隨后導致相關信號通路的活躍。不同類別的外泌體囊泡有三個征：表面具涂層的膜泡、內含纖維的膜泡、電子致密囊泡。

外泌體作為疾病診斷的標志物具有其獨特優勢:(1)與正常細胞相比，病變細胞產生的外泌體在分泌量和內容物方面存在明顯差異。病變的細胞和組織能夠產生更多外泌體。(2)由于特殊的生成方式，外泌體的組成不同于來源細胞。其內包含的一些特異性蛋白質能夠揭示外泌體的起源、結構和運輸方式，有利于深入了解外泌體的產生機制。(3)病變細胞分泌的外泌體通過胞吐的過程進入血液、尿液等體液，囊泡狀結構能夠保護外泌體內部生物分子不受體液中蛋白酶、磷酸酶、核酸酶等干擾，有利于保持其結構完整和生物活性，通過對此類體液進行分析可以實現疾病的無創或微創檢測。外泌體可以作為“天然的納米粒子”來進行藥物遞送。細胞上清外泌體iTRAQ

外泌體與各種疾病的相關性被檢測出，特別是血液中釋放的病細胞來源的外泌體。海洋生物外泌體NTA

外泌體的提取分離的方法：1、超速離心法（差速離心）：超離法是較常用的外泌體純化手段，采用低速離心、高速離心交替進行，可分離到大小相近的囊泡顆粒。超離法因操作簡單，獲得的囊泡數量較多而廣受歡迎，但過程比較費時，且回收率不穩定（可能與轉子類型有關），純度也受到質疑；此外，重復離心操作還有可能對囊泡造成損害，從而降低其質量。2、密度梯度離心：在超速離心力作用下，使蔗糖溶液形成從低到高連續分布的密度階層，是一種區帶分離法。通過密度梯度離心，樣品中的外泌體將在1.13-1.19g/ml的密度范圍富集。此法獲得的外泌體純度較高，但步驟繁瑣，耗時。海洋生物外泌體NTA

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