通用細胞凍存液(無血清)的簡介：隨著實驗室細胞培養的發展，除了原代培養之外，人工開發出來的細胞系的保存越來越重要。細胞冷凍的原理在于盡可能降低細胞內的晶體形成，減少細胞內水凝固所形成的高濃度溶質對細胞造成的低溫損傷，從提高細胞復蘇時的存活率。細胞凍存的數量應保證復蘇時低溫保護劑獲得稀釋，稀釋后的細胞濃度扔高于正常傳代的細胞濃度為宜，這是因為當低溫保護劑稀釋以后，該濃度一般不會對細胞造成毒性損傷。通用細胞凍存液(無血清)主要由培養基、DMSO等組成，不含血清，是一種經典的無菌凍存液。用于各種哺乳動物原代細胞、傳代細胞系、雜交瘤細胞等的凍存。無血清細胞凍存液的優勢：即用型，無需現配，直接將細胞懸浮于凍存液中即可。廣州正規無血清細胞凍存液

凍存細胞注意事項：冷凍保護劑可降低培養基的冰點，并可減緩冷卻速度，較大降低冰晶形成的危險(冰晶可損傷細胞，導致細胞死亡)。注：DMSO可促進有機分子進入組織。操作含DMSO的試劑時，應采用與此類物質安全危害相適應的設備和操作規范，并應按照當地法規處置此類試劑。建議可使用廠商生產的無血清細胞凍存液，使用方便，復蘇率高。注意冷凍保護劑DMSO的品質：DMSO應為試劑級等級，無菌且無色，以5-10ml小體積分裝，4℃避光保存，勿作多次解凍昆明無血清細胞凍存液生產廠家無血清細胞凍存液，含多種保護劑成分。

細胞凍存液的配制可選用10%的DMSO加上90%的小牛血清，可以現用現配。除了這個方式，還可選擇20%的DMSO機上80%的小牛血清，配成兩倍的儲存液，在使用時細胞懸液和凍存液按照1:1的比例混勻使用，特別的方便。凍存液可直接置于-20攝氏度的環境中保存。使用細胞凍存液需要注意以下幾點：1、在使用凍存液前，需要確保細胞凍存液已經完全融化，并要輕輕的混勻。對融化后的細胞凍存液要置于4℃的環境中保存。2、使用凍存液之前應該確保凍存前的細胞生長情況比較良好，比如說細胞需要處于對數生長期，并且凍存的時候存活率大于90%。3、在使用細胞凍存液期間，為了保證可以發揮較佳的效果，建議將細胞凍存在液氮之中，這樣可以長時間的進行保存。如果說將細胞置于-80℃的環境下保存，那么保存的時間大約為1年。

新常態下細胞凍存指南：細胞凍存及復蘇的基本原則是慢凍速融，實驗證明這樣可以較大限度的保存細胞活力。目前細胞凍存多采用甘油或二甲基亞砜作保護劑，這兩種物質能提高細胞膜對水的通透性，加上緩慢冷凍可使細胞內的水分滲出細胞外，減少細胞內冰晶的形成，從而減少由于冰晶形成造成的細胞損傷。復蘇細胞應采用快速融化的方法，這樣可以保證細胞外結晶在很短的時間內即融化，避免由于緩慢融化使水分滲入細胞內形成胞內再結晶對細胞造成損傷。典型的細胞凍存液是在生長培養基中加入5%到10%的DMSO和5%到40%的血清，或只是在血清中加入10%的DMSO。目前在有些實驗室中仍然采用這種自制自配的凍存液，優點是成本低，適合自己的細胞。無血清細胞凍存液產品性能：2-8℃即可穩定保存，無需冷凍，即取即用。

無血清細胞凍存液與含血清細胞凍存液對比：傳統的細胞凍存液是使用培養基、血清和DMSO按照一定的比例混合，其中DMSO的含量是10%，血清的含量是10%，統稱為含血清細胞凍存液。含血清細胞凍存液的一般的凍存方法是梯度降溫凍存法，如先將冷凍管置于4℃冰箱10分鐘，然后移至-20℃冰箱30分鐘，再移至-80℃冰箱保存16-18個小時（或隔夜），較后才移至液氮罐中進行長期的儲存。可見，含血清細胞凍存液凍存細胞時遇到的問題：1.凍存細胞時需現配凍存液(如購買市面上通用的含血清細胞凍存液，此步可省略)。2.需要程序降溫（4℃→-20℃→-80℃→液氮），步驟繁瑣，耗時耗力。3.含血清，細胞污染(病毒、霉菌和支原體等)的風險更高。4.血清批次、品質間差異導致凍存液的批次間差異。5.需液氮凍存，且不能原位（如孔板）凍存。清洗細胞，充分洗凈殘留凍存液。濟南無血清細胞凍存液供應商

凍存液成分由原來血清變為無血清，無動物源成分。廣州正規無血清細胞凍存液

使用方法：1)細胞超凈臺無菌環境，1.5mlEP管內加入細胞混懸劑均勻混懸細胞，細胞終濃度為5×106個/ml，混懸液體積為200μl。細胞凍存劑冰水混合物中預冷，逐滴加入細胞凍存劑800μl，細胞混懸劑與細胞凍存劑的體積比控制在1:4。2)開啟程序性降溫，降溫速率為1℃/min，較后降溫至-80℃以下進行凍存。將比較例1凍存后細胞的復蘇率與實施例5凍存后細胞的復蘇率進行對比，具體結果如附圖1所示，可見采用本發明的凍存方法能夠明顯提高細胞的復蘇率。其他實施例通過與比較例1進行比較，也得到相同的試驗結果。本發明的凍存方法不僅可以明顯提高凍存后細胞復蘇率，同時還可減少不同批次細胞凍存復蘇率不穩定、以及避免由血清中的支原體，細菌，朊細菌及其他細菌顆粒引發的污染。廣州正規無血清細胞凍存液