HE染色常見問題：切片染色不均勻，有片狀的弱著**存在答：（1）取材時組織太厚，固定過久，導致深部組織固定不佳，而表淺組織過度固定，而透明、脫水、浸蠟均是如此，這樣在后期染色時就會出現染色不均勻。應該將厚的組織剖開固定。（2）制片過程有問題，切片厚薄不一，或者有刀痕，或組織與玻片間存在氣泡。同一張切片厚薄不一，一般都是在制片時，刀片固定不佳或刀片鈍或刀片與組織角度不佳（一般比較好角度為5°）（3）脫蠟前未烘烤，脫蠟時間過短或脫蠟液使用過久，導致脫蠟不徹底。（4）染色液過少，著色不均勻；或染色時部分組織干涸而另一部分濕潤，這樣會導致組織吸附染料的能力不一。（5）分化不當。南京英瀚斯，專業的病理染色實驗服務平臺。骨組織HE染色的操作流程。陜西靠譜的HE染色檢測

HE染色等常規染色，組化或是熒光優先推薦做石蠟切片。原因：石蠟切片對組織的形態保存比冰凍切片好，并且對抗原基本無影響。脂質染色（油紅O染**odipy染色，尼羅紅染色）必須做冰凍切片，不能做石蠟切片。以下染色必須要新鮮或冷凍組織冰凍切片：ROS染**-半乳糖甘酶染色，ATP染色，膽固醇染色。如果標本已經放在-80°冰箱冷凍了之后又想要做石蠟切片，將標本取出來千萬不要解凍直接放于固定液內固定（在固定液內邊解凍邊固定）。組織形態結構保存完好順序：新鮮組織立即投入固定液內固定石蠟切片＞組織-80°冷凍后投入固定液內固定石蠟切片＞新鮮組織立即投入固定液內固定冰凍切片＞組織-80°冷凍后直接冰凍切片。河北結果客觀的HE染色分析HE染色過程中常見的問題以及應對方法。

HE染色標本一般是針對石蠟標本，脂滴和石蠟都是的有機物， 都具有非極，脂滴應該可以溶解石蠟的。 HE染色就是用蘇木精和伊紅對細胞內的核糖體和細胞質染色的方法。 H:Hematoxylin，蘇木精 E:Eosin，伊紅 蘇木精（Hematoxylin,H）是一種堿染料，可將細胞核和細胞內核糖體染成藍紫色，被堿染料染色的結構具有嗜堿。 伊紅（，E）是一種酸染料，能將細胞質染成紅色或淡紅色，被酸染料染色的結構具有嗜酸。染色前，須用二甲苯脫去切片中的石蠟，再經由高濃度到低濃度酒精，***入蒸餾水，就可染色。南京英瀚斯生物

HE染色是目前國內外病理診斷上***采用的常規染色方法。切片質量的好壞，可直接影響疾病診斷的及時與準確性。因此，能制作出一張高質量的HE染色切片，是必須掌握的技術之一。送檢樣本經4%多聚甲醛固定，固定狀態良好后，嚴格按照本單位病理實驗檢測SOP程序進行修剪、脫水、包埋、切片、染色、封片***鏡檢合格的樣片。在顯微鏡下瀏覽切片或瀏覽數字切片，在不同倍數下詳細觀察組織切片情況，對切片中基本病理改變如充血、淤血、出血、水腫、變性、壞死、增生、纖維化、機化、肉芽組織、炎性變化等情況文字描述，并反映出片子之間的差異。對典型病變部位成像并在word文檔中用箭頭標識。冰凍組織切片的HE染色。

HE染色觀察細胞凋亡，凋亡檢測中形態學方法是**直觀、可靠的方法之一。對組織和各種細胞進行染色后，在光學顯微鏡、熒光顯微鏡或電子顯微鏡下觀察，通過觀察細胞的形態或染色的類型來判斷凋亡的發生與否。細胞涂片或細胞甩片的制備：對于貼壁細胞，可將蓋玻片放于培養器皿中，讓培養細胞長于玻片上，然后用藥物誘導細胞凋亡后取出，用4%多聚甲醛固定5min。對于懸浮細胞，用藥物誘導細胞凋亡后，離心1000r/min收集細胞，用PBS洗2次，收集調整細胞數為1X105/ml，涂片或用離心甩片，用4%多聚甲醛固定5min；在光學顯微鏡下，貼壁細胞由原來的梭形或多角形變小、變圓，核呈藍色或藍黑色，胞漿呈淡紅色，核固縮、破碎，形成凋亡小體等。懸浮細胞，整個細胞皺縮，核固縮，破碎，形成凋亡小體，染色質顏色加深等。專業的HE染色服務平臺，南京英瀚斯生物。天津性價比高的HE染色外包

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HE染色細胞質過染分析及應對原因：（1）伊紅染色液濃度太高，特別是焰紅燃料、四溴四氯熒光素鈉的存在；（2）切片在伊紅染色時間過長；（3）切片在伊紅染色后經乙醇脫水步驟時過的太快，而使乙醇分化伊紅的作用不能產生。對策：適當稀釋伊紅染色液，減少伊紅染色時間，或者使切片在乙醇脫水等步驟時，停留時間相對均勻。同樣，也要檢查切片的厚度是否合適。切片中出現藍黑色沉淀物分析及應對原因：蘇木精染色液中的金屬膜，黏附在玻片上。對策：每天染色前仔細過濾蘇木精染色液，或建議使用半氧化蘇木精染色液，如Gill蘇木精染色液,可以避免過多的金屬膜產生。陜西靠譜的HE染色檢測

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