血液制品熱原檢測流程

來源：發布時間：2025-11-07

MAT 法熱原檢測標曲采用非倍比稀釋，而非 1-0.5-0.25 的倍比稀釋，主要優勢在于提升標曲準確性與適用性，避免稀釋誤差影響。一是可密集覆蓋關鍵濃度區間：熱原檢測的重點關注區為低濃度拐點（如 0.0125-0.1EU/mL）與高濃度平臺區（如 0.5-1EU/mL），非倍比稀釋可在這些區間設置更多濃度點（如 0.0125、0.025、0.05、0.1、0.25、0.5、1EU/mL），提升曲線擬合精度，而倍比稀釋低濃度點少，易導致低濃度熱原定量不準。二是降低稀釋誤差累積：倍比稀釋需連續稀釋（如 1EU/mL→0.5EU/mL→0.25EU/mL），每一步誤差會累積，導致低濃度點實際濃度偏離理論值；非倍比稀釋通過單獨配制每個濃度點（如直接用標準品配制 0.025EU/mL），避免誤差累積，提升標曲可靠性。三是適配不同樣品濃度：非倍比稀釋可根據樣品預期濃度調整標曲范圍，如樣品預期濃度 0.05EU/mL，可增加 0.025、0.05、0.1EU/mL 點，確保樣品濃度落在標曲線性區，而倍比稀釋范圍固定，靈活性差。這些優勢使非倍比稀釋成為 MAT 法標曲配制的優先選擇方式。

基于人體免疫機制的 MAT 熱原檢測，為熱原檢測提供了新的可靠途徑。血液制品熱原檢測流程

熱原檢測技術自 20 世紀初問世以來，經歷了 “動物試驗→體外生化檢測→細胞生物學檢測” 的三次關鍵變革，每一次變革均推動檢測效率、準確性與全面性的提升。20 世紀初至中期，熱原檢測方法只有家兔熱原試驗，通過觀察家兔體溫變化篩查熱原，雖實現了廣譜檢測，但存在動物成本高、操作繁瑣、靈敏度低、種屬差異大等局限，難以滿足制藥行業快速發展需求。20 世紀 60 年代，鱟試驗法（LAL 法）的發明開啟了熱原檢測的 “體外生化時代”，利用鱟血變形細胞裂解物的凝血級聯反應檢測細菌內毒素，靈敏度提升至 ng 級，檢測時間縮短至 1-2 小時，迅速成為制藥行業常規質控方法；但該方法依賴鱟資源，易受 β- 葡聚糖干擾，且只能檢測內毒素，無法覆蓋非內毒素熱原。21 世紀以來，重組技術與細胞生物學技術的發展推動熱原檢測進入 “全熱原管控時代”：重組級聯試劑（rCR）與重組 C 因子試劑（rFC）通過基因工程技術制備，擺脫對鱟資源的依賴，消除葡聚糖干擾，實現標準化生產；單核細胞活化反應測定（MAT）利用人源單核細胞檢測全類型熱原，填補非內毒素熱原檢測空白，且結果更貼近人體實際反應。

合規性熱原檢測MAT法熱原檢測技術百年演進，關鍵驅動力是靈敏度、速度與動物福利的平衡。

MAT法熱原檢測中，ELISA 加終止液后的讀數時間需嚴格控制，以保障 IL-6 檢測信號穩定。湖州申科生物MAT試劑盒說明書明確要求，終止液添加后需在 10 分鐘內完成讀數，且需避光操作 —— 原因在于，終止液（如硫酸）會終止 TMB 顯色反應，但生成的黃色產物在光照下易降解，超過 10 分鐘后 OD 值會下降，導致 IL-6 檢測值偏低。讀數前需進行 30 秒震蕩混勻，確保孔內液體濃度均勻，避免因局部濃度差異導致復孔 OD 值波動。酶標儀波長需設置為 450nm，若儀器含 600nm 參考波長，可同時檢測 600nm 波長以扣除背景干擾（如細胞碎片導致的光散射），提升檢測準確性。需注意的是，讀數時不可覆蓋封板膜或蓋子，避免膜上凝結的水蒸氣滴入孔中，導致 OD 值異常升高。若因儀器故障無法及時讀數，需將微孔板密封后置于 4℃避光保存，并在 30 分鐘內完成讀數，同時在記錄中注明延遲原因，評估延遲對結果的影響（如延遲 20 分鐘，OD 值可能下降 15%，需校正后使用）。

單核細胞活化反應測定（MAT）是近年來熱原檢測領域的突破性技術，其原理基于人體免疫系統對熱原的天然應答機制：人源單核細胞（如 THP-1 細胞系或新鮮人全血單核細胞）在熱原刺激下，會活化胞內炎癥信號通路，釋放 IL-6、TNF-α 等促炎細胞因子，通過 ELISA 檢測細胞因子的濃度，即可間接反映樣品中熱原的總量與活性。與傳統檢測方法相比，MAT 法具備三大不可替代的優勢：一是廣譜性，可同時檢測細菌內毒素、病毒、真菌毒素、支原體等所有類型熱原，填補了鱟試驗法只能檢測內毒素的 “非內毒素熱原盲區”，尤其適用于疫苗、基因治療產品等易受多種熱原污染的高風險產品；二是人源相關性，采用與人體同源的細胞模型，檢測結果更貼近臨床實際熱原反應，避免家兔試驗中動物種屬差異導致的誤判；三是高靈敏度，對細菌內毒素的檢測限可達 0.0125EU/mL，對非內毒素熱原（如酵母多糖、腺病毒）的檢測限低至 ng/pg 級，滿足低限值產品的質控需求。

保持細胞活性穩定，是實現準確熱原檢測的基礎條件。

MAT法熱原檢測中，樣品與細胞共培養時長需嚴格控制，以保障炎癥因子分泌量穩定。說明書要求共培養 24 小時，雖未明確允差，但實驗驗證顯示，±30 分鐘的允差對結果無明顯影響 —— 細胞因子（如 IL-6）分泌具有時間依賴性，24 小時左右達到分泌平臺期，半小時差異不會導致分泌量大幅波動。若實驗室對結果穩定性要求極高（如 QC 放行檢測），建議嚴格按 24 小時操作，避免因時長差異引入誤差；若為預實驗（如樣品稀釋倍數摸索），±30 分鐘允差可接受，但需在記錄中注明實際培養時長。需注意的是，共培養時長不可超過 26 小時或短于 22 小時：過長會導致細胞活性下降（炎癥因子分泌減少），過短則未達分泌平臺期（檢測信號偏低），均可能導致熱原濃度低估。此外，培養環境需保持穩定（37℃、5% CO?），溫度波動會影響細胞代謝，間接導致共培養時長的實際效果偏離，因此需定期校準培養箱溫度，確保環境條件一致。

單核細胞系傳代可控，20代以內TLR表達與炎癥因子分泌保持穩定，確保熱原響應一致性。安徽高效熱原檢測

湖州申科熱原檢測試劑盒聯合了國內相關機構室間驗證，與傳統RPT法結果高度一致，符合法規要求。血液制品熱原檢測流程

單核細胞系培養的高度可控性，為熱原檢測結果的可靠性提供關鍵保障。其培養基配方（如營養成分、血清濃度）可定制，確保細胞獲取充足營養；培養環境（37℃、5% CO?、濕度≥90%）可恒定控制，維持細胞好的活性與 TLR 受體表達水平，避免因環境波動導致細胞功能異常。這種可控性還能防止細胞遺傳突變與外源污染（如支原體、病毒），確保不同批次單核細胞系的熱原響應一致性，讓熱原檢測結果批間差異小，符合 GMP 對檢測方法穩定性的要求。

血液制品熱原檢測流程

標簽：內毒素檢測熱原檢測支原體檢測宿主細胞殘留DNA檢測宿主細胞蛋白（HCP）殘留檢測

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