高效熱原檢測結果判定
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發布時間：2025-12-18
傳統細菌內毒素檢查法（BET）只能檢測革蘭氏陰性菌的 LPS，無法識別革蘭氏陽性菌 LTA、真菌酵母多糖、病毒鞭毛蛋白等非內毒素熱原，存在漏檢風險；同時，部分樣品（如脂質體、表面活性劑制劑）會因內毒素吸附導致低內毒素回收（LER），BET法難以準確定量。MAT 法通過單核細胞表面的多種 TLR 受體（TLR1-TLR10），可識別不同類型熱原：TLR4 識別 LPS、TLR2/TLR6 識別 LTA 與酵母多糖、TLR5 識別鞭毛蛋白、TLR3 識別病毒 dsRNA 等，實現 “全熱原覆蓋”。湖州申科生物熱原檢測試劑盒（MAT法）的驗證數據顯示，其對不同濃度非內毒素熱原均有響應：如 0.1-100μg/mL 鞭毛蛋白可檢測到 0.005-0.035EU/mL熱原活性，0.1-10μg/mL LTA 對應 0.1-0.7EU/mL 熱原活性，1-100μg/mL 雷西莫特（TLR7/8 配體）對應 0.5-3.0EU/mL 熱原活性。此外，MAT法檢測的是熱原的生物活性（而非單純 LPS 含量），可避免 LER 導致的假陰性，為CGT等高風險產品提供更有保障的熱原檢測方案。
MAT 熱原檢測中細胞活性影響巨大，活率需達一定標準保證檢測效果。高效熱原檢測結果判定
含消除炎癥成分的樣品可能抑制 IL-6 產生，需通過科學評估排除干擾，確保 MAT 法熱原檢測結果準確。根據藥典要求，若樣品能抑制單核細胞促炎癥因子釋放，需通過以下步驟驗證適用性：首先，選擇樣品 A、2A、4A 倍稀釋（均不超過上限有效稀釋倍數 MVD），避免高濃度消除炎癥成分過度抑制；其次，進行供試品加標回收率實驗，若回收率在 50%-200% 的合格范圍，說明消除炎癥成分未影響熱原檢測；再對比 “供試品配制的標曲” 與 “稀釋液配制的標曲”，若兩者 IL-6 檢測值相差在 ±20% 以內，表明樣品基質對檢測無系統性干擾。例如，某消除炎癥單抗樣品經 2 倍稀釋后，加標回收率達 120%，兩種標曲 IL-6 值相差 15%，判定可適用 MAT 法。若出現回收率偏低（<50%），可嘗試增加稀釋倍數（如 8A 倍）或采用熱滅活（若樣品耐熱）去除消除炎癥活性；若仍無法排除干擾，需結合家兔法進行對比驗證，避免因消除炎癥成分導致假陰性。
高效熱原檢測結果判定生物制品的高蛋白、螯合劑基質易對鱟試驗產生抑制，rCR與MAT聯合策略可消除干擾并控制熱原。
一次合格的 MAT 法熱原檢測，需同時滿足 “合格標曲” 與 “合格樣品檢測值及回收率” 兩大關鍵條件。合格標曲需具備四要素：一是良好線性，采用 4-Parameter Logistic 擬合，R2 需接近 1.0，避免線性不佳導致定量偏差；二是良好信號值，各濃度點 OD 值需呈梯度變化，高濃度點 OD 值需足夠（如上限濃度 OD600 達 1.0 左右），信號過低會影響靈敏度；三是良好 CV，復孔間 CV 需控制在合理范圍（定量限內≤25%、定量上下限≤30%），確保重復性；四是良好背景值，陰性對照 OD 值需低于標曲下限濃度點 10%，排除外源污染。合格樣品檢測值則需滿足加標回收率在 50%-200%，例如文檔中某樣品 10 倍稀釋回收率 41.3%（不合格），20 倍 71.3%（接近合格），40 倍 97.7%（合格），需在 MVD 范圍內調整稀釋倍數，同時樣品熱原濃度需低于規定限值（CLC），方可判定樣品符合要求。
MAT 法熱原檢測標曲采用非倍比稀釋，而非 1-0.5-0.25 的倍比稀釋，主要優勢在于提升標曲準確性與適用性，避免稀釋誤差影響。一是可密集覆蓋關鍵濃度區間：熱原檢測的重點關注區為低濃度拐點（如 0.0125-0.1EU/mL）與高濃度平臺區（如 0.5-1EU/mL），非倍比稀釋可在這些區間設置更多濃度點（如 0.0125、0.025、0.05、0.1、0.25、0.5、1EU/mL），提升曲線擬合精度，而倍比稀釋低濃度點少，易導致低濃度熱原定量不準。二是降低稀釋誤差累積：倍比稀釋需連續稀釋（如 1EU/mL→0.5EU/mL→0.25EU/mL），每一步誤差會累積，導致低濃度點實際濃度偏離理論值；非倍比稀釋通過單獨配制每個濃度點（如直接用標準品配制 0.025EU/mL），避免誤差累積，提升標曲可靠性。三是適配不同樣品濃度：非倍比稀釋可根據樣品預期濃度調整標曲范圍，如樣品預期濃度 0.05EU/mL，可增加 0.025、0.05、0.1EU/mL 點，確保樣品濃度落在標曲線性區，而倍比稀釋范圍固定，靈活性差。這些優勢使非倍比稀釋成為 MAT 法標曲配制的優先選擇方式。
選擇熱原檢測單核細胞活化反應測定法，即是選擇更準確、更安全、更可持續的檢測方案。
中國藥典與歐洲藥典對 MAT 熱原檢測的細胞類型及復孔數有明確要求，且存在細節差異。細胞類型上，兩者均認可人全血、PBMC（外周血單個核細胞，至少 4 個供體，歐洲藥典建議 8 個供體），中國藥典明確將單核細胞系納入，歐洲藥典則要求單核細胞系需做支原體污染檢測、細胞鑒別等；檢測方法均為 “熱原刺激細胞 + ELISA 檢測 IL-6/IL-1β/TNF-α”。復孔數方面，兩者均規定平行孔≥4、濃度點≥4，中國藥典額外要求標曲 r≥0.90，主要目的是通過多重復孔抵消 PBMC 的不穩定性，確保熱原檢測結果準確可靠。
2023年PRIMM研究：聚山梨酯80 mRNA疫苗中，家兔法熱原檢查因LER漏檢41%，MAT回收率98%+。江蘇重組蛋白熱原檢測常見問題分析細胞因子IL-6因穩定性高、半衰期長，被選為熱原檢測MAT法關鍵定量指標，優于TNF-α與IL-1β。高效熱原檢測結果判定
MAT 法與傳統家兔法在熱原檢測中，性能差異明顯，MAT 法在準確性、效率與合規性上更具優勢。從結果評判來看，MAT 法以 “加標回收率 50%-200%、供試品濃度 < 規定限值（CLC）” 為合格標準，靈敏度達 0.0125EU/mL，可準確定量熱原濃度；而家兔法只能定性（觀察體溫升高），靈敏度低（約 0.1-0.5EU/mL），易因家兔個體差異（如免疫狀態、應激反應）導致假陰性。從檢測效率來看，MAT 法樣品與細胞共培養 24 小時即可出結果，且可批量檢測（96 孔板一次處理多個樣品）；家兔法需連續觀察 72 小時，每次只能檢測少量樣品，耗時且人力成本高。從合規性來看，MAT 法不使用動物，符合 3R 原則，已被歐盟接受（EP 刪除家兔法）；家兔法因動物實驗屬性，面臨歐盟等地區的法規限制。此外，MAT 法重復性優（復孔 CV 可控制在 30% 以內），家兔法因個體差異 CV 常超 50%，進一步凸顯 MAT 法在現代熱原檢測中的優勢。
高效熱原檢測結果判定
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