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浙江原料藥內毒素檢測重組級聯試劑(rCR)

來源: 發布時間:2025-12-16

內毒素檢測的實驗方案需遵循“標曲可靠性驗證(靈敏度復核)-稀釋倍數計算-干擾試驗”的完整流程,以保障檢測結果準確合規。首先進行標曲可靠性試驗,用標準內毒素制備至少3個濃度的稀釋液(相鄰濃度間稀釋倍數不超過10,下限濃度不低于鱟試劑標示檢測限),每濃度設 3 支平行管,同時做2支陰性對照;當陰性對照的吸光度小于或透光率大于標準曲線下限的檢測值或反應時間大于標準曲線下限的反應時間,對數據進行線性回歸,相關系數r的幅值≥0.980時試驗方有效,否則需重新操作。接著按公式 L=K/M 確定樣本內毒素限值,K 值依給藥途徑而定,M結合人均60kg體重、1.62m2 體表面積及上限給藥劑量計算,也可參考藥典行標。隨后明確有效稀釋上限倍數(MVD),即供試品允許稀釋的上限倍數,確保在此范圍內檢測限值。開展樣本干擾試驗,制備供試品溶液(A)、供試品加標溶液(B,加標濃度為標曲中點)、標準曲線溶液(C)及陰性對照(D),按公式 R=(Cs-Ct)/λm×100%計算加標回收率,50%-200%為合格;若鱟試劑、生產工藝等發生變化,需重新進行干擾試驗,保障內毒素檢測的可靠性。
脂質體樣本用重組鱟試劑檢測,可稀釋或用 DMSO 裂解,釋放包裹的內毒素以便檢出。浙江原料藥內毒素檢測重組級聯試劑(rCR)

浙江原料藥內毒素檢測重組級聯試劑(rCR),內毒素檢測

湖州申科生物重組級聯試劑(rCR)采用基因工程技術合成,完全模擬了天然鱟試劑中的酶促級聯放大反應。重組鱟試劑反應體系中包含重組C因子、重組B因子和重組凝固酶原。當供試品中存在內毒素,重組C因子識別內毒素后活化,會依次級聯活化下游重組B因子和重組凝固酶原。凝固酶原轉化為具有生物活性的凝固酶后,識別并催化下游帶顯色基團的底物產生顯色反應。顯色反應的強度和內毒素濃度成正相關,從而定量檢測內毒素。本產品用于定量測定人用和動物用注射藥物、生物制品及醫療器械等樣品中的細菌內毒素的含量。
原料藥內毒素檢測法規要求塑料器皿對內毒素吸附力強,制備內毒素工作標準品(CSE)稀釋液建議用硼硅酸鹽玻璃管。

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隨著動物保護理念和法規要求升級,重組因子C法(rFC法)作為 LAL 法的替代技術逐漸普及。重組 C 因子是以基因重組的方式表達的 LAL 試劑中的 C 因子,C 因子被內毒素活化后切割熒光底物產生游離熒光基團,通過檢測熒光信號可以反應活化后的蛋白酶活性,并由此可以推算出內毒素的含量。與傳統 LAL 法相比,rFC 法無需依賴鱟血資源,避免了天然 LAL 試劑批間差異大、易受 β- 葡聚糖干擾等問題,且反應特異性更強。目前,《美國藥典》、《歐洲藥典》等法規已收錄 rFC 法,歐盟更推薦其用于疫苗等高風險產品檢測,在保證檢測準確性的同時,符合動物福利和可持續發展要求。

β- 葡聚糖是鱟試劑(LAL)檢測內毒素的常見干擾物,可活化 LAL 中的 G 因子通路,導致假陽性結果。干擾多見于含植物源原料的樣品(如中藥注射劑)、生物發酵產物或環境真菌污染的樣品。消除方法包括:使用特異性 LAL 試劑(如添加葡聚糖抑制劑的 LAL),其對內毒素敏感而不受 β- 葡聚糖影響;采用加熱處理(如 80℃加熱 10 分鐘)破壞 β- 葡聚糖結構;或通過親和層析去除樣品中的 β- 葡聚糖。檢測時需設置 β- 葡聚糖陽性對照,若對照反應陽性而內毒素標準品無反應,表明存在干擾,需優化前處理步驟后重新檢測。
鱟試劑含多種酶和輔助因子,批次間活性差異可能導致內毒素檢測結果變異性。

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SHENTEK®重組級聯試劑為內毒素檢測高效解決方案。法規層面,符合美國藥典(USP)、歐洲藥典(EP)及日本藥典(JP)要求,滿足國際標準檢測需求。抗干擾性強,與天然鱟具有相同反應機制,檢測結果等效,適配復雜樣本場景。特異性表現突出,不含 G 因子,避免與 β - D 葡聚糖反應產生假陽性,保障結果可靠。檢測靈敏度高,線性范圍達 0.005 - 5EU/mL ,可準確捕捉低濃度內毒素。反應快速,60分鐘內即可完成檢測,提升檢測效率。兼容性佳,能兼容動態顯色法的酶標儀,無需額外投入設備成本。關鍵的是,無動物源試劑,遵循 3R 原則(減少、替代、優化),不依賴鱟血,解決資源依賴問題,實現長期穩定供應。且通過重組表達生產,批次差異小,重復性好,穩定性高,為生物制品、制藥等行業內毒素檢測提供可靠、可持續的工具,助力企業把控質量,契合綠色環保與高效檢測的雙重需求,在保障檢測準確性與合規性的同時,推動行業向更環保、更高效方向發展。
內毒素檢測方法學驗證需覆蓋線性、精密度,確保不同批次檢測結果穩定。北京非動物源內毒素檢測LER現象

內毒素指示劑(ECV)是凍干脂多糖,監測制藥工藝高溫除內毒素效果。浙江原料藥內毒素檢測重組級聯試劑(rCR)

樣品中的高滲透性成分(如高濃度鹽、糖)會通過改變反應體系滲透壓,抑制鱟試劑反應,影響內毒素檢測結果。例如,濃度為 70% 的葡萄糖溶液、高濃度氯化鈉溶液等,會形成高滲透壓環境,導致鱟試劑中的蛋白質脫水變性,喪失酶活性,進而使內毒素無法被正常檢測,出現假陰性。這類高滲透性基質的干擾機制明確 —— 通過破壞蛋白質結構影響酶促反應,且干擾程度與濃度正相關。為消除這類干擾,解決方案是使用內毒素檢查用水稀釋樣品:根據樣品滲透性高低,逐步稀釋至適宜濃度(通常需稀釋至滲透壓與生理鹽水接近),降低對蛋白質的脫水作用,恢復鱟試劑中酶的活性。稀釋過程中需注意,稀釋倍數需在方法驗證確定的 “無干擾稀釋范圍” 內,避免因過度稀釋導致內毒素濃度低于檢測限,確保內毒素檢測既能規避高滲透性抑制,又能準確捕捉微量內毒素。
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